Dimetilformamida adicionada no sêmen de caprinos sobre a longevidade e funcionalidade da membrana espermática após criopreservação

Autores

  • Wildelfrancys Lima Souza Universidade Federal do Vale do São Francisco, Centro de Pesquisa em Suínos, Espécies Nativas e Silvestre-CPSENS.
  • Elenice Andrade Moraes Universidade Federal do Vale do São Francisco, Colegiado de Zootecnia.

DOI:

https://doi.org/10.31416/rsdv.v5i1.136

Palavras-chave:

espermatozoide, hiposmótico, membrana plasmática

Resumo

objetivou-se avaliar o efeito da dimetilformamida associada ou não ao glicerol no diluente de sêmen de caprinos antes da criopreservação sobre a longevidade e a funcionalidade da membrana espermática. Ejaculados de quatro caprinos foram coletados e diluídos com Tris diluente. Posteriormente, foram determinados os seguintes tratamentos experimentas: Controle; TG + 2% de dimetilformamida (DMF2); TG + 3% de DMF (DMF3); TG + 4% de DMF (DMF4); TG + 5% de DMF (DMF5); e TG + 2% de glicerol + 2% DMF (DMF2G). As amostras foram resfriadas a 5 °C/2 h, envasadas em palhetas de 0,5 mL e colocadas sob vapor de nitrogênio por 7 min, após este tempo as palhetas foram imersas no nitrogênio liquido. Os tratamentos foram descongelados a 37 ºC/30 segundos. As amostras foram analisadas quanto à longevidade da motilidade progressiva e quanto ao teste hiposmótico. As variáveis foram submetidas à análise de variância e as médias foram comparadas pelo teste de Tukey a 5% de probabilidade. A motilidade progressiva dos espermatozoides foi maior ao longo dos 120 min do TTR, nas amostras tratadas com DMF2, quando comparado às demais concentrações testadas (P<0,05). Observou-se que os espermatozoides de caprinos tratados com DMF2 antes da criopreservação, apresentaram maior percentual de células com conservação na funcionalidade da membrana plasmática quando comparado aos demais tratamentos (P<0,05). Em conclusão, o uso de 2% de dimetilformamida no diluente de sêmen caprino antes da criopreservação proporciona efeitos benéficos aos espermatozoides após descongelamento, sendo indicado como substituto do glicerol na criopreservação de espermatozoides de caprinos.

Biografia do Autor

Wildelfrancys Lima Souza, Universidade Federal do Vale do São Francisco, Centro de Pesquisa em Suínos, Espécies Nativas e Silvestre-CPSENS.

Graduado em Zootecnia na Universidade Federal do Vale do São Francisco. Mestre em Ciência Animal-Univasf. Tem experiência na área de Zootecnia, com ênfase em Reprodução Animal, atuando principalmente nos seguintes temas: criopreservação espermática e nutrição animal.

Elenice Andrade Moraes , Universidade Federal do Vale do São Francisco, Colegiado de Zootecnia.

Graduada em Zootecnia pela Universidade Federal de Viçosa (2002), Mestrado (2004) e Doutorado (2008) em Zootecnia na aréa de Fisiologia e Reprodução Animal pela Universidade Federal de Viçosa (2008). Doutorado Sanduiche na Colorado State University (2006-2007). Pós-Doutorado em Zootecnia na aréa de Reprodução Animal pela Universidade Federal de Viçosa (2008-2009). Estagio Pós Doutoral pela CAPES na Colorado State University na área de Reprodução Animal e Biologia Molecular (2009). Atualmente é Professora Adjunto IV no Colegiado de Zootecnia da Fundação Universidade Federal do Vale do São Francisco (UNIVASF). Professora responsável pelo setor de produção de Suinocultura. Coordenadora Responsável pelo Centro de Suínos, Espécies Nativas e Silvestres (CPSENS)/FINEP-Univasf. Professora Permanente no Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal (CPGCA) na Univasf. Ministra as disciplinas na área de Suinocultura, Equideocultura e Cunicultura na Graduação, e Coordenada as disciplinas de Seminário I e Técnicas Reprodutivas em Equinos na Pós-Graduação. Atua em diversas Comissões na Univasf: Comissão Permanente de Controle Disciplinar (CPCD), Comissão Permanente de Progressão Docente (CPPD), Comissão Gestora Permanente de Concurso Docente (CGPCD), Comissão Própria de Avaliação de Curso (CAC-CPA) e do Núcleo Docente Estruturante do Colegiado de Zootecnia (NDE).

Referências

ALVARENGA,M.A.; PAPA,F.O.; LANDIM-ALVARENGA,F.C.;MEDEIROS,A.S. Amides as cryoprotectants for freezing stallion semen: a review. Anim.Reprod.Sci.89(1-4):105-113, 2005.

AZEREDO, Z.A.; ESPER, C.R. &RESENDE, K.T. Evaluation of plasma membrane integrity of frozen–thawed goat spermatozoa with or without seminal plasma, Small Rumin. Res. 41:257–263, 2001.

BALL, B.A. &VO, A. Osmotic tolerance of equine spermatozoa and the effects of soluble cryoprotectants on equine sperm motility, viability and mitochondrial membrane potential, J. Androl. 22:1061–1069, 2001.

BEZERRA, F.S.B.; CASTELO, T.S.; ALVES, H.M.; OLIVEIRA, I.R.S.; LIMA, G.L.; PEIXOTO, G.C.X.; BEZERRA, A.C.S.D.; SILVA, A.R. Objective assessment of the cryoprotective effects of dimethylformamide for freezing goat sêmen. Cryobiology, 63:263–266, 2011.

BIANCHI, I.; CALDERAM, K.; MASCHIO, E.F.; MADEIRA, E.M.; ULGUIM, R.R.; CORCINI, C.D. Evaluation of amides and centrifugation temperature in boar semen cryopreservation. Theriogenology. 69(5):632-638, 2008.

BUCAK, M.N.; SARIOZKAN, S.; TUNCER, P.B.; ULUTAS, P.A.; AKCADAG, H.I. Effect of antioxidants on microscopic semen parameters, lipid peroxidation and antioxidant activities in Angora goat semen following cryopreservation, Small Rumin. Res. 81: 90–95, 2009.

BUCAK, M.N.; SARIOZKAN, S.; TUNCER, P.B.; SAKIN, F.; ATESSAHIN, A.; KULAKSIZ, R.; CEVIK, M. The effect of antioxidants on post-thawed Angora goat (Capra hircus ancryrensis) sperm parameters, lipid peroxidation and antioxidant activities, Small Rumin. Res. 89:24–30, 2010.

CHANG, H.Y.; SHIH, T.S.; GUO, Y.L.; TSAI, C.Y.; HSU, P.C. Sperm function in workers exposed to N,N-dimethylformamide in the synthetic leather industry, Fertil. Steril. 81:1589–1594, 2004.

CHOE, C.Y.; KIM, J.G.; CHO, S.R.; SON, D.S.; KIM, Y.K.; BALASUBRAMANIAN, S.; CHOE, S.Y.; RHO, G.J. Influence of seasons, extenders, slow and rapid freezing on seminal characters in Korean native bucks, Reprod. Domest. Anim. 41:55–60, 2006.Colégio Brasileiro de Reprodução Animal-CBRA. Manual para exame andrológico e avaliação de sêmen animal. 3.ed. Belo Horizonte. 104 p, 2013.

CORREA, J.R. & ZAVOS, P.M. The hypoosmotic swelling test: its employment as an assay to evaluate the functional integrity of the frozen-thawed bovine sperm membrane. Theriogenology. 42(2):351-360, 1994.

CURRY,M.R. Cryopreservation of semen from domestic livestock. Rev. Reprod. 5(1):46-52, 2000.

DALIMATA, A.M. & GRAHAM, J,K.Cryopreservation of rabbit spermatozoa using acetamide in combination with trehalose and methylcellulose, Theriogenology 49:831–841, 1997.

GILMORE, J.A.; MCGANN, L.E.; LIU, J.; GAO, D.Y.; PETER, A.T.; KLEINHANS, F.W.; CRITSER, J.K. Effect of cryoprotectant solutes on water permeability of human spermatozoa, Biol. Reprod. 53:985–995, 1995.

GONZALEZ, R.A.R. Effect of cryopreservaton using different freezing techniques and cryoprotectants on sperm parameters and membrane integrity of bull sperm, Thesis, University of Sao Paulo, Pirassununga, Brazil, 2004.

HAMMERSTED, R.H.; GRAHAM, J.K. & NOLAN, J.P. Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to survive, J. Androl. 11:73–88, 1990.

HOLT, W.V. Basic aspects of frozen storage of semen, Anim. Reprod. Sci. 62:3–22, 2000.

JULIANI, G.C. & HENRY, M. Efeito do glicerol, etilenoglicol, acetamida e leite desnatado na criopreservação de espermatozoides equinos. Arq Bras Med Vet Zootec. 60(5):1103-1109, 2008.

KATHIRAVAN, P.; KALATHARAN, J.; KARTHIKEYA, G.; RENGARAJAN, K.; KADIRVEL, G. Objective sperm motion analysis to assess dairy bull fertility using computer aided system –a review, Reprod. Domest. Anim. 46:165–172, 2011.

KÖPPEN-GEIGERPEEL, M.C.; FINLAYSON, B.L. & MCMAHON, T.A. Updated world map of the Köppen-Geiger climate classification. Hydrol. Earth Syst. Sci. 11:1633-1644, 2007.

KOZDROWSKI, R.; DUBIEL, A.; BIELAS, W.; DZIECIOŁ, M. Two protocols of cryopreservation of goat semen with the use of computer-assisted sêmen analysis system, Acta Vet. Brno. 76:601–604, 2007.

KUNDU, C.N.; CHAKRABORTY, J.; DUTTA, P.; BHATTACHARYYA, D.; GHOSH, A.; MAJUMDER, G.C. Development of a simple sperm cryopreservation model using a chemically defined medium and goatcauda epididymal spermatozoa, Cryobiology 40:117–125, 2000.

LOPES, K.R.F.; COSTA, L.L.M.; LIMA, G.L.; SOUZA, A.L.P.; SILVA, A.R. Dimethylformamide is no better than glycerol for cryopreservation of canine semen, Theriogenology 72:650–654, 2009.

LUZARDO, B.; CASTRO, M.C.; GAMBOA, F.A.; LOPEZ, M.A.; LOPEZ, A.Y.R.A. Osmolarity of coconut water (Cocos nucifera) based diluents and their effect over viability of frozenboar semen. Am J Anim VetSci. 5(3):187-191, 2010.

MIKI, K. Energy metabolism and sperm function. Soc.Reprod. Fertil. (Suppl.)65:309-325, 2007.

National Requirement Council - NRC. Nutrient Requirements of Small Ruminants: Sheep, Goats, Cervids, and New World Camelids. National Academy of Science,Washintgton, D.C. 347p, 2007.

OKUDA, Y.; SEITA, Y.; HISAMATSU, S.; SONOKI, S.; SHINO, M.; MASAOKA, T.; INOMATA, T.; KAMIJO, S.I.; KASHIWAZAKI, N. Fertility of spermatozoa cryopreserved with 2% acetamide or glycerol through artificial insemination in the Japanese White rabbit, Exp. Anim. 56:29–34, 2007.

PERUMAL, P.; VUPRU, K. & RAJKHOWA, C. Effect of addition of taurine on the liquid storage (5°C) of mithun (Bos frontalis) semen. Vet. Med. Int. 2013(4):1-7, 2013.

PURDY, P.H. A review on goat sperm cryopreservation, Small Rumin. Res. 63:215–225, 2006.

SADIA, A.; RASHEDUL, I.M.; YAHIA, K.M.A.M.; SHARMIN, A.Q. Cryopreservation of Black Bengal buck semen: effects of diluents and freezing on sperm motility and morphology, Anim. Sci. J. 79:550–553, 2008.

SALAMON,S. & MAXWELL,W.M.C. Storage of ram semen. Anim Reprod Sci. 62(1-3):77-111, 2000.

SANTOS, M.A.M.; GRADELA, A.; MORAES, E.A.; SOUZA, W.L.; ALVES, N.G.; COSTA, J.M.S.; MATOS, W.C.G. Características do sêmen a fresco e descongelado de garanhões da raça Nordestina. Pesqui. Vet. Bras. 35(11):925-932, 2015.

SARIOZKAN, S.; BUCAK, M.N.; TUNCER, P.B.; TASDEMIR, U.; KINET, H.; ULUTAS, P.A. Effects of different extenders and centrifugation/washing on postthaw microscopicoxidative stress parameters and fertilizing ability of Angora buck sperm, Theriogenology 73:316–323, 2010.

SINGH, M.P.; SINHA, A.K. & SINGH, B.K. Effect of cryoprotectants on certain seminal attributes and on the fertility of buck spermatozoa, Theriogenology 43:1047–1053, 1995.

SMITH, A.H. &POLGE, C. Survival of spermatozoa at low temperatures, Nature 166:668–671, 1950.

SNOECK, P.P.N.; HENRY, M. &MELO, M.I.M. EFEITO DE DIFERENTES DILUIDORES SOBRE A VIABILIDADE espermática pós-descongelação de sêmen eqüino. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, Belo Horizonte, v.59, n.1, p.56-64, 2007.

SOUZA,W.L.;MORAES,E.A.;COSTA,J.M.S.;GRAHAM,J.K.Cholesterol-loaded cyclodextrin in fresh goat sperm improves cryosurvival rates. Rev. Bras. Ciênc. Vet. 23(1-2):93-98, 2016.

SUAREZ, S.S. & PACEY, A.A. Sperm transport in the female reproductive tract, Hum. Reprod. Update12:23–37, 2006.

Universidade Federal de Viçosa (UFV)-SAEG. Manual de utilização do programa SAEG(Sistema para Análise Estatística e Genéticas). Viçosa: UFV. p149, 1997.

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Publicado

2017-04-30

Como Citar

SOUZA, W. L. .; MORAES , E. A. . Dimetilformamida adicionada no sêmen de caprinos sobre a longevidade e funcionalidade da membrana espermática após criopreservação. Revista Semiárido De Visu, [S. l.], v. 5, n. 1, p. 11–20, 2017. DOI: 10.31416/rsdv.v5i1.136. Disponível em: https://semiaridodevisu.ifsertao-pe.edu.br/index.php/rsdv/article/view/136. Acesso em: 15 ago. 2022.

Edição

Seção

Ciências Agrárias - Artigos